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ELISA是一种广泛用于测定液体样品中蛋白质、抗体或激素的免疫分析技术。酶联免疫吸附试验(ELISA)的标准程序通常是将蛋白质、抗体或激素(即抗原)直接或用捕获抗体(captureAb)固定在固相载体上,然后加入一抗(Ab),形成抗原抗体复合物。如果该抗体已经酶标记,则可直接用于测定抗原的量。若没有,则可使用另一种酶标记的二抗来测定抗原的量。测定抗原量的方法是加入酶的底物,作用后产生的颜色深度与样品中抗原的量成正比。基于此原理,可计算出样品中抗原的总量或浓度。
常用ELISA方法的优缺点
常用的ELISA技术主要有四种:直接法、间接法、双抗体夹心法和竞争法。下文将逐一解释这些方法的概念、优缺点。
直接法
将抗原直接固定在固相载体上,加入酶标记的一抗,即可测定抗原的总量,这个一抗的特异性非常重要。
优点:操作简单,无需使用二抗,可避免交叉反应。
缺点:实验中的一抗必须用酶标记,但并不是每种抗体都适合标记,而且成本相对较高。
间接法
该测定方法与直接法类似,不同之处在于一抗未经酶标记,而是使用酶标记的二抗来识别一抗,从而测定抗原的量。
优点:二抗可以增强信号,并且针对不同的检测方法有多种选择。未经酶标记的一抗可保留最高的免疫反应性。
缺点:发生交互反应的概率较高。
夹心ELISA
待检测的抗原被包被在两种抗体之间,其中一种抗体将抗原固定在固相载体上,即捕获抗体。另一种抗体是检测抗体。这种抗体可以用酶标记,直接测定抗原的量;也可以不标记,然后用酶标记的二抗测定抗原的量。必须仔细选择这两种抗体,以避免相互作用或竞争相同的抗原结合位点。
优点:灵敏度高、特异性高、无需事先纯化抗原。
缺点:抗原必须具有两个以上的抗体结合位点。
竞争性ELISA
样品中的抗原(游离抗原)与纯化固定在固相载体上的抗原(固定抗原)竞争同一种抗体。样品中游离抗原较多时,能结合的抗体较多,而固定抗原则只有较少的抗体能与其结合,反之亦然。经过清洗步骤后,游离抗原抗体复合物被洗去,只留下固定抗原抗体复合物。将结果与仅有固定抗原的对照结果进行比较,根据颜色差异即可计算出样品中的抗原。
优点:可以适用于比较不纯的样品,数据重现性很高。
缺点:总体敏感性和特异性较差。
总而言之,ELISA技术因其操作简便、灵敏度高、特异性强等优点,已成为生物医学研究和临床诊断中不可或缺的工具。四种主要的ELISA方法,即直接法、间接法、双抗体夹心法和竞争法,各有其优缺点,适用于不同的实验目的和抗原特性。研究人员需要根据具体的实验需求,例如抗原的纯度、可获得的抗体类型以及所需的灵敏度和特异性,选择最合适的ELISA方法。对不同ELISA方法的理解和合理选择,将有助于获得更准确可靠的实验结果,推动相关领域的研究进展。原文地址:https://www.mlbio.cn/article-3340.html
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